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文章分享 |基于CRISPR / Cas13a系統(tǒng)建立大口黑鱸彈狀病毒檢測(cè)方法《基于CRISPR Cas13a系統(tǒng)建立大口黑鱸彈狀病毒檢測(cè)方法》 張敏琳, 黃楓淇, 左小玲, 梁建韜, 梁凱珊, 單金紅, 李宗烊, 喻婕, 羅麗媛, 禤梓杰, 趙會(huì)宏, 王慶. 基于CRISPR/Cas13a系統(tǒng)建立大口黑鱸彈狀病毒檢測(cè)方法[J]. 水生生物學(xué)報(bào), 2024, 48(2): 283-291. DOI: 10.7541/2023.2023.0199 大口黑鱸(Micropterus salmoides),也叫加州鱸或美國(guó)黑鱸,是一種原產(chǎn)于北美的淡水魚(yú)類,近年來(lái)在全球范圍內(nèi)成為一種重要的養(yǎng)殖魚(yú)類,因其市場(chǎng)需求高:大口黑鱸肉質(zhì)緊實(shí)、刺少,味道鮮美,營(yíng)養(yǎng)豐富,尤其富含高蛋白和低脂肪,符合消費(fèi)者對(duì)健康食品的需求,因此市場(chǎng)售價(jià)較高,常用于高端餐飲市場(chǎng)。生長(zhǎng)快:大口黑鱸生長(zhǎng)速度較快,一般6-8個(gè)月可以達(dá)到商品規(guī)格,適合短周期養(yǎng)殖,能快速實(shí)現(xiàn)投資回報(bào)。抗病力強(qiáng):相較于其他養(yǎng)殖魚(yú)類,大口黑鱸對(duì)環(huán)境適應(yīng)能力強(qiáng),較少爆發(fā)大規(guī)模疾病,降低了養(yǎng)殖風(fēng)險(xiǎn)。生態(tài)養(yǎng)殖:大口黑鱸可以與其他淡水魚(yú)類如鰱魚(yú)、草魚(yú)等混養(yǎng),有助于實(shí)現(xiàn)池塘生態(tài)平衡和資源利用最大化,進(jìn)一步提高養(yǎng)殖效益等因素,受到食客們與水產(chǎn)養(yǎng)殖戶們的歡迎,近年來(lái)其養(yǎng)殖規(guī)�?焖僭鲩L(zhǎng)。 彈狀病毒科 大口黑鱸雖然較為抗病,但在不良養(yǎng)殖環(huán)境下仍可能患上一些疾病,其中大口黑鱸彈狀病毒(Micropterus salmoides rhabdovirus, MSRV)危害巨大:最早于1991年在美國(guó)佛羅里達(dá)州被發(fā)現(xiàn),該病毒最初是在野生大口黑鱸群體中檢測(cè)到,隨后逐漸在美國(guó)的多個(gè)淡水湖泊和水庫(kù)中傳播開(kāi)來(lái),成為大口黑鱸的主要病原之一。 透射電鏡下觀察病變細(xì)胞中的病毒粒子的形態(tài)大小 章文言,張玉軍,李陳,等.大口黑鱸彈狀病毒的分離與鑒定[J].華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2022,41(6):230‐236. ZHANG Wenyan,ZHANG Yujun,LI Chen,et al.Isolation and identification of Micropterus salmoides rhabdovirus[J].Journal of Huazhong Agricultural University,2022,41(06):230-236. 傳播源常為受感染的魚(yú)苗或成魚(yú)、受污染的水體、以及攜帶病毒的野生魚(yú)類;這種病毒可以通過(guò)直接接觸、糞便排泄、以及水體傳播,在不良水質(zhì)或高密度養(yǎng)殖條件下更易擴(kuò)散。該病毒能引起幼魚(yú)嗜睡、漫游、腹部腫脹和體形扭曲, 以及誘導(dǎo)壞死性潰瘍和多器官出血, 一旦感染死亡率超過(guò) 90%。’ 章文言,張玉軍,李陳,等.大口黑鱸彈狀病毒的分離與鑒定[J].華中農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2022,41(6):230‐236. ZHANG Wenyan,ZHANG Yujun,LI Chen,et al.Isolation and identification of Micropterus salmoides rhabdovirus[J].Journal of Huazhong Agricultural University,2022,41(06):230-236. 每年因MSRV導(dǎo)致的大口黑鱸魚(yú)苗損失超過(guò)30%, 目前關(guān)于該病毒的治療與檢測(cè)方法還不成熟, 并沒(méi)有特效藥可以醫(yī)治,故很有必要在感染之前及時(shí)發(fā)現(xiàn)病毒并做好有效的防范措施, 能夠在一定程度上減少養(yǎng)殖過(guò)程中的損失; 此外現(xiàn)有檢測(cè)技術(shù)較難做到在無(wú)復(fù)雜檢測(cè)設(shè)備的情況下開(kāi)展現(xiàn)場(chǎng)檢測(cè),面對(duì)這一挑戰(zhàn),華南農(nóng)業(yè)大學(xué)的研究團(tuán)隊(duì)開(kāi)發(fā)出了一種MIRA結(jié)合CRISPR-系統(tǒng)的全新檢測(cè)方法,該方法特異性強(qiáng), 靈敏度高并且操作簡(jiǎn)便, 極大提升了MSRV的檢測(cè)效率,也為盡早發(fā)現(xiàn)MSRV采取防控措施提供幫助。 安普未來(lái)生物·成品科研試劑:大口黑鱸彈狀病毒恒溫檢測(cè)試紙條型試劑盒文章所用產(chǎn)品:RNA恒溫快速擴(kuò)增試劑盒(基礎(chǔ)型)-II MIRA引物對(duì)篩選使用兩對(duì)不同MIRA引物對(duì)含有靶序列的基因片段進(jìn)行擴(kuò)增, 擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳。電泳圖位于100 bp的位置, 3個(gè)泳道均出現(xiàn)明亮的條帶, 表明有非特異性擴(kuò)增產(chǎn)物。泳道2和3中250 bp處為擴(kuò)增的目的條帶。用Image J軟件分別將電泳圖泳道2中長(zhǎng)度為224 bp和泳道3中長(zhǎng)度為255 bp的目的條帶進(jìn)行定量分析, 并用“灰度值”表示定量分析的結(jié)果。從分析結(jié)果得出, 灰度值越低表示引物利用率高, 即引物特異性結(jié)合擴(kuò)增效率高。 結(jié)果表明: 采用MIRA-F2/R2引物對(duì)時(shí), 特異性結(jié)合擴(kuò)增效率高。 MIRA引物對(duì)篩選電泳膠圖以及灰度值分析 a. 泳道M: 2000 bp DNA marker; 泳道1. 陰性DNA樣品擴(kuò)增; 泳道2. MIRA-F1/R1引物對(duì)擴(kuò)增目的片段(方框所示224 bp); 泳道3. MIRA-F2/R2引物對(duì)擴(kuò)增目的片段(方框所示255 bp); b. 條帶灰度值分析(方框所示) CRISPR/Cas13a檢測(cè)體系CRISPR/Cas13a檢測(cè)體系反應(yīng)結(jié)束后用紫外燈進(jìn)行照射, 觀察結(jié)果。 CRISPR/Cas13a檢測(cè)體系-熒光亮度圖 1—3. 加入RNA標(biāo)準(zhǔn)品的全體系; 4. 不加入crRNA; 5. 不加入Cas13a蛋白; 6. 不加入ssRNA報(bào)告探針; 7. 陰性對(duì)照 CRISPR/Cas13a-MSRV最佳反應(yīng)體系我們分別用RNA標(biāo)準(zhǔn)品和擴(kuò)增的樣品RNA進(jìn)行實(shí)驗(yàn),靶向目標(biāo)RNA的定位速度, crRNA2要優(yōu)于crRNA1; crRNA1比crRNA2有更強(qiáng)的最終熒光信號(hào); crRNA1+crRNA2等比例混合使用能綜合兩者的優(yōu)點(diǎn), 反應(yīng)效率更好。 優(yōu)化CRISPR/Cas13a-MSRV檢測(cè)反應(yīng)條件檢測(cè)效果各數(shù)據(jù)圖 a. 用不同間隔序列的crRNA檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)品RNA的檢測(cè)結(jié)果比較; b. 檢測(cè)系統(tǒng)在不同溫度下檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)品RNA的熒光信號(hào)數(shù)據(jù)比較; c. 用不同濃度的RNA報(bào)告探針檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)品的熒光信號(hào)數(shù)據(jù)比較; d. 用不同濃度比率的Cas13a/crRNA探針復(fù)合物檢測(cè)標(biāo)準(zhǔn)品的檢測(cè)結(jié)果比較; 探究反應(yīng)溫度對(duì)檢測(cè)系統(tǒng)的影響, 設(shè)置了31℃、34℃、37℃和41℃不同反應(yīng)溫度, CRISPR/Cas13a-MSRV檢測(cè)體系最佳反應(yīng)溫度是37℃。 探究ssRNA報(bào)告探針濃度對(duì)檢測(cè)系統(tǒng)的影響, 在測(cè)試范圍內(nèi), 熒光強(qiáng)度與ssRNA報(bào)告探針濃度呈正相關(guān), ssRNA報(bào)告探針濃度在 500-700 nmol/L檢測(cè)效果差異不大, 考慮到現(xiàn)實(shí)經(jīng)濟(jì)問(wèn)題, 最佳的ssRNA報(bào)告探針濃度為500 nmol/L。 為探究不同Cas13a與crRNA的反應(yīng)濃度比對(duì)檢測(cè)系統(tǒng)的影響, 當(dāng)以每份100 nmol/L比例的基礎(chǔ)上,Cas13a﹕crRNA的比例為4﹕1和3﹕1時(shí), Cas13a達(dá)到飽和狀態(tài); 當(dāng)Cas13a數(shù)量一定時(shí), 熒光信號(hào)的強(qiáng)度并沒(méi)有與crRNA數(shù)量的增加呈正相關(guān)。因此, Cas13a與crRNA比例為2﹕1時(shí), CRISPR/Cas13a-MSRV檢測(cè)系統(tǒng)能夠獲得最大的檢測(cè)活性。 靈敏度評(píng)估為探究CRISPR/Cas13a-MSRV檢測(cè)系統(tǒng)對(duì)MSRV的最低檢測(cè)濃度, 故將RNA標(biāo)準(zhǔn)品進(jìn)行10倍梯度連續(xù)稀釋, 并用CRISPR/Cas13a-MSRV檢測(cè)系統(tǒng)進(jìn)行檢測(cè)。 CRISPR/Cas13a-MSRV檢測(cè)系統(tǒng)至少能檢測(cè)到102 fM MSRV的目標(biāo)RNA。當(dāng)目標(biāo)RNA濃度低于102 fM時(shí), 機(jī)器檢測(cè)到的熒光信號(hào)與空白對(duì)照無(wú)明顯差異。因此, CRISPR/Cas13a-MSRV檢測(cè)系統(tǒng)至少能檢測(cè)到102 fM MSRV的ssRNA。 評(píng)估CRISPR/Cas13a-MSRV檢測(cè)系統(tǒng)對(duì)MSRV的靈敏度 特異性評(píng)估為評(píng)估CRISPR/Cas13a-MSRV檢測(cè)系統(tǒng)的特異性, 使用優(yōu)化后的CRISPR/Cas13a檢測(cè)系統(tǒng)檢測(cè)不同的水產(chǎn)RNA病毒, 包括RGNNV、BFNNV和TPNNV。只有MSRV的檢測(cè)體系能檢測(cè)出熒光信號(hào), 其他病毒的檢測(cè)體系檢測(cè)出的熒光信號(hào)與陰性對(duì)照無(wú)差別, 為陰性結(jié)果。這表明CRISPR/Cas13a-MSRV檢測(cè)系統(tǒng)可特異性靶向MSRV, 該檢測(cè)方法特異性很好。 評(píng)估CRISPR/Cas13a-MSRV檢測(cè)系統(tǒng)對(duì)MSRV的特異性 樣品檢測(cè)對(duì)從鱸魚(yú)養(yǎng)殖場(chǎng)采集有明顯患病跡象的病魚(yú)樣品, 驗(yàn)證病魚(yú)所感染病原體是否為MSRV, 使用MSRV衣殼蛋白序列特異性引物進(jìn)行PCR擴(kuò)增, 電泳圖中相對(duì)應(yīng)條帶送測(cè), 比對(duì)確認(rèn)為MSRV。 MSRV序列信息確認(rèn) a. MSRV引物的PCR擴(kuò)增228 bp產(chǎn)物條帶; b. 與NCBI比對(duì)的MSRV衣殼蛋白序列, 加粗序列為上下游引物結(jié)合位點(diǎn), 陰影區(qū)域?yàn)镃RISPR/Cas13a-MSRV crRNA1結(jié)合的靶標(biāo)位置 對(duì)感染了MSRV的病魚(yú)樣品進(jìn)行預(yù)處理和預(yù)擴(kuò)增病毒RNA, 然后與陰性對(duì)照組進(jìn)行檢測(cè)。同時(shí)提取樣品的cDNA做常規(guī)檢測(cè)qPCR進(jìn)行比較。 用CRISPR/Cas13a-MSRV檢測(cè)系統(tǒng)檢測(cè)出陽(yáng)性樣品(3、6、7、8、9、12、13、14和15號(hào))與常規(guī)檢測(cè)qPCR的結(jié)果一樣, 其中qPCR的CQ值處于18-25; 而陰性樣品(1、2、4、5、9、10和11號(hào))閾值循環(huán)數(shù)則都大于38, 表明樣品無(wú)攜帶MSVR病毒。綜上所述, CRISPR/Cas13a-MSRV檢測(cè)系統(tǒng)與常規(guī)檢測(cè)RT-qPCR的檢測(cè)數(shù)據(jù)相符合, 表明CRISPR/Cas13a-MSRV檢測(cè)系統(tǒng)的可行性且在一定程度上可以代替原先常規(guī)繁雜的檢測(cè)方法。 樣品qPCR檢測(cè)數(shù)據(jù)以及CRISPR檢測(cè)數(shù)據(jù)縱向比較圖 a. qPCR檢測(cè)MSRV臨床樣品閾值循環(huán)數(shù)圖; 將檢測(cè)到的樣本循環(huán)數(shù)分別與陰性參照循環(huán)數(shù)用T-tests 分析(**P<0.01); b. Cas13a結(jié)合MIRA檢測(cè)MSRV臨床樣品熒光圖; 將檢測(cè)到的樣本熒光值分別與陰性參照熒光值用T-tests分析(**P<0.01) 綜上所述, 本研究建立的CRISPR/Cas13a-MSRV檢測(cè)方法不需要昂貴的實(shí)驗(yàn)儀器, 可使現(xiàn)場(chǎng)檢測(cè)變得快速、準(zhǔn)確且方便。因此, 在實(shí)際養(yǎng)殖過(guò)程中如果采用該種檢測(cè)方法對(duì)MSRV進(jìn)行及時(shí)的發(fā)現(xiàn), 并采取針對(duì)性的有效措施, 這在很大程度上能夠減少養(yǎng)殖過(guò)程中病害帶來(lái)的損失, 并且該檢測(cè)方法快捷、靈敏度高、特異性高, 具有較大的應(yīng)用和推廣前景。 安普未來(lái)多酶恒溫快速核酸擴(kuò)增技術(shù)MIRA技術(shù)在恒溫39°C-42°C下核酸擴(kuò)增,反應(yīng)時(shí)間僅為5-20 min。此外,不需要嚴(yán)格的實(shí)驗(yàn)室條件,應(yīng)用場(chǎng)景多元化:綜合醫(yī)院檢驗(yàn)科、基層醫(yī)療、居家檢測(cè)、田間地頭等。 試劑產(chǎn)品形態(tài)多樣化:凍干粉、凍干微球等;顯示結(jié)果的多樣性:凝膠電泳、熒光曲線、膠體金試紙條等。試劑性能穩(wěn)定、便于操作、方便存儲(chǔ)運(yùn)輸。 并以MIRA為核心平臺(tái)技術(shù)研發(fā)出“超快速核酸釋放技術(shù)”、“雙通道恒溫?zé)晒鈾z測(cè)儀”、“一體化全自動(dòng)封閉檢測(cè)系統(tǒng)”、“自測(cè)型核酸檢測(cè)裝置”等一系列配套產(chǎn)品,打造快速分子檢測(cè)整體解決方案。 |